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Thermo PA542816--DFNA5 ANTIBODY 100 microliter
高特異性：經(jīng)過嚴(yán)格的驗證和篩選過程，該抗體僅與 DFNA5 蛋白發(fā)生特異性結(jié)合，對其他蛋白無明顯交叉反應(yīng) 。在復(fù)雜的生物樣品中，能夠準(zhǔn)確識別 DFNA5 蛋白，避免因非特異性結(jié)合產(chǎn)生的假陽性結(jié)果，為科研數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性提供有力保障。例如在多種組織混合樣品的檢測中，可清晰區(qū)分出 DFNA5 蛋白的信號，不受其他蛋白干擾。
高靈敏度：即使樣品中 DFNA5 蛋白含量較低，該抗體也能有效識別并結(jié)合 。能夠檢測到低至納克級別的 DFNA5 蛋白，適用于微量樣品或 DFNA5 蛋白低表達(dá)樣本的研究，幫助科研人員捕捉到微弱的蛋白信號，挖掘潛在的生物學(xué)信息。
廣泛的應(yīng)用兼容性：可適用于免疫組化、免疫熒光、免疫印跡等多種實驗技術(shù) 。無論是在組織水平探究 DFNA5 蛋白的空間分布，還是在細(xì)胞和分子水平分析其表達(dá)量變化，都能發(fā)揮出色作用。并且適用于不同種屬來源的樣品，如人、小鼠、大鼠等，滿足科研人員多樣化的實驗需求。
穩(wěn)定的性能：采用先進(jìn)的生產(chǎn)工藝和嚴(yán)格的質(zhì)量控制體系，保證了抗體批次間的一致性 。在不同時間、不同實驗室條件下使用，均可獲得穩(wěn)定可靠的實驗結(jié)果，減少因抗體質(zhì)量波動導(dǎo)致的實驗誤差，有利于實驗的重復(fù)驗證和科研成果的可靠性。
方便易用：該抗體以 100 microliter 規(guī)格提供，濃度經(jīng)過優(yōu)化，科研人員無需復(fù)雜的稀釋等預(yù)處理，可直接按照推薦的實驗條件使用 。同時，產(chǎn)品附有詳細(xì)的說明書，包含各種應(yīng)用的操作步驟、推薦稀釋比例等信息，即使是初次使用的科研人員也能快速上手，順利開展實驗。
抗體檢查：收到抗體后，立即檢查包裝是否完好，標(biāo)簽信息是否清晰準(zhǔn)確，包括產(chǎn)品名稱、貨號、濃度、有效期等 。確認(rèn)無誤后，將抗體短暫離心（低速，如 2000 - 3000 rpm，離心 1 - 2 分鐘），使附著在管蓋上的抗體集中于管底，避免損失。
樣品準(zhǔn)備：
免疫組化：對于組織樣品，需進(jìn)行固定（常用 4% 多聚甲醛）、脫水、包埋等處理，制成石蠟切片或冰凍切片 。切片厚度一般為 4 - 6 微米，確保細(xì)胞和組織結(jié)構(gòu)完整，抗原表位暴露充分。在實驗前，需對切片進(jìn)行脫蠟（石蠟切片）、抗原修復(fù)等預(yù)處理步驟，恢復(fù)抗原的免疫活性。
免疫熒光：細(xì)胞樣品可直接在細(xì)胞培養(yǎng)板中進(jìn)行處理，如使用 4% 多聚甲醛固定，0.1% Triton X - 100 進(jìn)行通透處理，使抗體能夠進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)與抗原結(jié)合 。對于組織樣品，同樣需制成切片并進(jìn)行類似的固定、通透處理。
免疫印跡：收集細(xì)胞或組織樣品，使用合適的裂解液進(jìn)行裂解（如含蛋白酶抑制劑的 RIPA 裂解液），通過超聲破碎或反復(fù)凍融等方法，使細(xì)胞充分裂解，釋放出細(xì)胞內(nèi)的蛋白質(zhì) 。隨后進(jìn)行蛋白質(zhì)定量（常用 BCA 法或 Bradford 法），確保上樣量一致。
試劑準(zhǔn)備：準(zhǔn)備好實驗所需的其他試劑，如封閉液（常用 5% 脫脂奶粉或 BSA）、洗滌緩沖液（如 TBST：Tris - HCl 緩沖液 + Tween 20）、二抗（根據(jù)檢測方法選擇合適的標(biāo)記二抗，如 HRP 標(biāo)記二抗用于免疫印跡的化學(xué)發(fā)光檢測，熒光標(biāo)記二抗用于免疫熒光檢測）等 。所有試劑應(yīng)確保新鮮、無污染，按照說明書要求配制和保存。
免疫組化：
封閉：將切片置于濕盒中，滴加封閉液，室溫孵育 1 - 2 小時，封閉非特異性結(jié)合位點 。
一抗孵育：棄去封閉液，用洗滌緩沖液輕輕沖洗切片 3 次，每次 5 分鐘 。然后滴加稀釋好的 DFNA5 抗體（推薦稀釋比例 1:100 - 1:500，具體可根據(jù)預(yù)實驗結(jié)果調(diào)整），4℃過夜孵育，使抗體與 DFNA5 蛋白充分結(jié)合 。
洗滌：次日，棄去一抗，用洗滌緩沖液沖洗切片 5 次，每次 5 分鐘，洗去未結(jié)合的抗體 。
二抗孵育：滴加相應(yīng)的標(biāo)記二抗（如 HRP 標(biāo)記的二抗，稀釋比例 1:200 - 1:1000），室溫孵育 1 - 2 小時 。
顯色：對于 HRP 標(biāo)記的二抗，使用 DAB 顯色試劑盒進(jìn)行顯色，顯微鏡下觀察顯色情況，當(dāng)出現(xiàn)棕黃色陽性信號時，用蒸餾水終止顯色 。
復(fù)染、封片：用蘇木精對細(xì)胞核進(jìn)行復(fù)染，脫水、透明后，使用中性樹膠封片，在顯微鏡下觀察并拍照記錄結(jié)果 。
免疫熒光：
封閉：將樣品置于濕盒中，滴加封閉液，室溫孵育 1 小時 。
一抗孵育：棄去封閉液，用洗滌緩沖液沖洗樣品 3 次，每次 5 分鐘 。滴加稀釋好的 DFNA5 抗體（推薦稀釋比例 1:100 - 1:500），4℃過夜孵育 。
洗滌：次日，用洗滌緩沖液沖洗樣品 5 次，每次 5 分鐘 。
二抗孵育：滴加相應(yīng)的熒光標(biāo)記二抗（如 Alexa Fluor 系列熒光二抗，稀釋比例 1:200 - 1:1000），室溫避光孵育 1 - 2 小時 。
封片：用含 DAPI 的抗熒光淬滅封片劑封片，在熒光顯微鏡下選擇合適的激發(fā)波長觀察，拍照記錄結(jié)果 。
免疫印跡：
上樣與電泳：將定量后的蛋白質(zhì)樣品與上樣緩沖液混合，煮沸 5 - 10 分鐘使蛋白質(zhì)變性 。將樣品加入 SDS - PAGE 凝膠的加樣孔中，進(jìn)行電泳（根據(jù)蛋白質(zhì)分子量大小選擇合適濃度的凝膠），使蛋白質(zhì)按分子量大小分離 。
轉(zhuǎn)膜：電泳結(jié)束后，將蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移到 PVDF 膜或 NC 膜上，可采用半干轉(zhuǎn)或濕轉(zhuǎn)的方法，根據(jù)轉(zhuǎn)膜設(shè)備的操作說明設(shè)置參數(shù)，確保蛋白質(zhì)有效轉(zhuǎn)移 。
封閉：將膜放入封閉液中，室溫振蕩孵育 1 - 2 小時 。
一抗孵育：棄去封閉液，用洗滌緩沖液沖洗膜 3 次，每次 5 分鐘 。將膜放入稀釋好的 DFNA5 抗體溶液（推薦稀釋比例 1:500 - 1:2000）中，4℃振蕩孵育過夜 。
洗滌：次日，用洗滌緩沖液沖洗膜 5 次，每次 5 分鐘 。
二抗孵育：將膜放入稀釋好的標(biāo)記二抗溶液（如 HRP 標(biāo)記二抗，稀釋比例 1:2000 - 1:5000）中，室溫振蕩孵育 1 - 2 小時 。
檢測：對于 HRP 標(biāo)記的二抗，使用化學(xué)發(fā)光試劑盒進(jìn)行檢測，將膜與發(fā)光底物孵育后，在化學(xué)發(fā)光成像儀上曝光成像，分析蛋白條帶 。
抗體保存：實驗結(jié)束后，將剩余抗體短暫離心，按照要求保存于 - 20℃冰箱 。避免反復(fù)凍融，若需多次使用，可將抗體分裝成小份，每次使用一份，減少對抗體活性的影響。
廢棄物處理：實驗過程中產(chǎn)生的廢棄物，如含有抗體、樣品的液體以及使用過的耗材等，應(yīng)按照實驗室生物安全和化學(xué)廢棄物處理規(guī)定進(jìn)行分類處理 。對于含有放射性或有毒有害試劑的廢棄物，需特殊處理，確保不對環(huán)境和人員造成危害。
抗體保存與使用：嚴(yán)格按照推薦的溫度保存抗體，避免溫度波動 。從冰箱取出抗體后，應(yīng)在冰上融化，待恢復(fù)至室溫后再使用，防止因溫度變化導(dǎo)致抗體失活。使用前務(wù)必短暫離心，確保抗體全部集中于管底，避免移液誤差。
樣品處理：在樣品制備過程中，要注意保持抗原的完整性和活性 。避免使用過強(qiáng)的裂解條件導(dǎo)致蛋白降解，同時防止樣品污染。對于組織樣品，固定和包埋過程要及時、規(guī)范，確?？乖砦徊槐黄茐摹?/span>
實驗條件優(yōu)化：不同的實驗樣本和實驗?zāi)康目赡苄枰煌目贵w稀釋比例和孵育條件 。在正式實驗前，建議進(jìn)行預(yù)實驗，摸索最佳的實驗條件，如抗體稀釋度、孵育時間和溫度等，以獲得理想的實驗結(jié)果。
二抗選擇：根據(jù)一抗的來源種屬和標(biāo)記方式，選擇合適的二抗 。確保二抗與一抗能夠特異性結(jié)合，且標(biāo)記物（如熒光基團(tuán)、HRP 等）與檢測方法相匹配。同時，注意二抗的稀釋比例，過高或過低的稀釋比例都可能影響檢測效果。
安全防護(hù)：實驗過程中使用的試劑，如多聚甲醛、Triton X - 100、DAB 等具有一定的毒性或刺激性 。操作時需佩戴手套、護(hù)目鏡等防護(hù)裝備，在通風(fēng)櫥中進(jìn)行，避免試劑接觸皮膚和吸入人體。實驗結(jié)束后，及時清洗實驗器材和操作臺，保持實驗室環(huán)境整潔安全。
無特異性條帶（免疫印跡）：
原因：可能是抗體稀釋比例過高、一抗或二抗孵育時間不足、轉(zhuǎn)膜不充分、樣品中目的蛋白含量過低等 。
解決方法：降低抗體稀釋比例，重新進(jìn)行實驗；延長一抗和二抗的孵育時間；檢查轉(zhuǎn)膜條件，優(yōu)化轉(zhuǎn)膜參數(shù)，確保蛋白質(zhì)有效轉(zhuǎn)移；增加上樣量或?qū)悠愤M(jìn)行濃縮處理，提高目的蛋白含量 。
背景信號過高（免疫組化 / 免疫熒光）：
原因：封閉不充分、抗體濃度過高、洗滌、二抗非特異性結(jié)合等 。
解決方法：延長封閉時間或更換封閉液；降低抗體稀釋比例；增加洗滌次數(shù)和時間，確保充分洗去未結(jié)合的抗體；選擇特異性更高的二抗，或降低二抗?jié)舛?。
熒光信號弱（免疫熒光）：
原因：抗體濃度過低、孵育時間不足、熒光淬滅、激發(fā)波長選擇錯誤等 。
解決方法：提高抗體稀釋比例；延長一抗和二抗的孵育時間；使用抗熒光淬滅封片劑，避免熒光信號淬滅；檢查熒光顯微鏡的激發(fā)波長設(shè)置，確保與熒光標(biāo)記二抗的激發(fā)波長匹配
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